产品中心
Product center
PD-1和PD-L1信号通路PCR 阵列-人
❤ 收藏

PD-1和PD-L1信号通路PCR 阵列-人

货号:WC-MRNA0285-H

800.00
¥800.00
¥800.00
¥800.00
重量:0.00KG
数量:
(库存99999)
立即购买
加入购物车
商品描述

货号:WC-MRNA0285-H




产品介绍:

       PD-1是T细胞激活后T细胞上表达的关键共抑制受体之一。在与其配体(主要是PD-L1)结合后,PD-1被激活,并在T细胞受体(TCR)和CD28信号传导附近重新募集磷酸酶SHP-2。该事件导致TCR和CD28途径中关键分子的去磷酸化和衰减,导致抑制T细胞增殖、活化、细胞因子产生、改变代谢和细胞毒性T淋巴细胞(CTL)杀伤功能,并最终导致活化T细胞死亡。机体进化出共同抑制途径,控制T细胞反应的幅度和持续时间,以限制组织损伤并维持自身耐受性。然而,肿瘤细胞通过PD-L1的过度表达劫持这些抑制途径以逃避宿主免疫监视。这为免疫检查点抑制剂在肿瘤学中的临床应用提供了科学依据。PD-L1在肿瘤微环境(TME)中异常高表达可归因于多种致癌信号的“初级”激活和炎症因子(如IFN-γ)的“次级”诱导。临床上,针对PD-1/PD-L1的抗体可使TME中“耗尽”的T细胞恢复活力,并在大量肿瘤(如黑色素瘤、淋巴瘤和错配修复缺陷性肿瘤)中显示出显著的客观反应和持久缓解,毒性特征可接受。然而,大多数患者仍然对抗PD-1/PD-L1治疗不耐受。识别预测性生物标志物并设计合理的基于PD-1的联合治疗成为癌症免疫治疗的重点。PD-L1表达、细胞毒性T淋巴细胞浸润和肿瘤突变负荷(TMB)通常被认为是影响PD-1/PD-L1阻断效果的最重要因素

       WCGENE®PCRArrayPlate操作简单。只需要将cDNA与qPCRmix混匀,然后加入每个孔里,上机检测,即可通过分析qPCR结果找到样品中差异表达的基因。具有重复性高,灵敏性强,操作便捷等特点。为实验研究者节省了预实验、引物验证、文献选择基因等繁琐的过程,可以直接了解不同信号通路或疾病中关键基因的差异情况。


产品内容

品    名:

PD-1 and PD-L1 Signaling pathway PCR Array plate

种    属:

Human

货    号:

WC-MRNA0285-H

规    格:

96孔板

品    牌:

Wcgene® biotech

产    品:

96孔引物预置板,封板膜,说明书

储    存:

-20℃

有效期:

六个月

生产日期:

见外包装

使用限制:

本产品仅供科研使用,不应用于诊断、预防和治疗疾病。


基因列表

Human

1

2

3

4

5

6

7

8

9

10

11

12

A

AKT1

CD274

CSNK2A1

HRAS

JAK2

MAP2K6

MTOR

NFKBIE

PIK3R3

PTEN

STAT1

TRAF6

B

AKT2

CD28

CSNK2A2

IFNG

JUN

MAP3K3

MYD88

NRAS

PLCG1

PTPN11

STAT3

ZAP70

C

AKT3

CD3D

CSNK2B

IFNGR1

KRAS

MAPK1

NFATC1

PDCD1

PPP3CA

PTPN6

TICAM1

NFKBIB

D

ALK

CD3E

EGF

IFNGR2

LAT

MAPK11

NFATC2

PIK3CA

PPP3CB

RAF1

TICAM2

PIK3R2

E

BATF

CD3G

EGFR

IKBKB

LCK

MAPK12

NFATC3

PIK3CB

PPP3CC

RASGRP1

TIRAP

PRKCQ

F

BATF2

CD4

EML4

IKBKG

MAP2K1

MAPK13

NFKB1

PIK3CD

PPP3R1

RELA

TLR2

RPS6KB2

G

BATF3

CHUK

FOS

IL6

MAP2K2

MAPK14

NFKBIA

PIK3R1

PPP3R2

RPS6KB1

TLR4

TLR9

H

CD247

CSK

HIF1A

JAK1

MAP2K3

MAPK3

ACTB

GAPDH

HPRT1

18S

NTC

NTC


PD-1和PD-L1信号通路图:

  

图片来源于:https://www.kegg.jp/pathway/map05235


检测原理

实时定量荧光PCR即通过实时检测 PCR 每一个循环扩增产物相对应的荧光信号,来实现对起始模板进行定量及定性的分析,本实验采取荧光染料法,在 PCR 反应体系中,加入荧光染料,荧光染料特异性地掺入 DNA 双链后,发射荧光信号,而不掺入链中的染料分子不会发射任何荧光信号,从而保证荧光信号的增加与 PCR 产物的增加完全同步。

产品介绍

PCR Array也被称作基因功能分类芯片或PCR阵列,它以96孔板或者384孔为载体,将目的基因引物固定在孔里,可同时定量、定性检测多个基因,具有高灵敏性和高特异性,是分析信号通路或某生物学功能相关基因表达状态的首选工具。

WCGENE® PCR ARRAY Plate90个目的基因和4个内参基因,只需要将cDNAqPCR MIX混匀,然后加入每个孔里,即可通过分析qPCR结果找到样品中差异表达的基因。具有重复性高,灵敏性强,操作便捷等特点。为实验研究者节省了预实验、引物验证、文献选择基因等繁琐的过程,可以直接了解不同信号通路或疾病中关键基因的差异情况。


流程图




操作步骤

1. 将样品提取RNA,并逆转成cDNA,样品要求如下(建议范围)

RNA

明显降解,A260/A280比值应为1.8-2.0

cDNA

严格按照所用试剂盒说明书操作

cDNA原液预实验内参范围:

ACTBGAPDHCT值:细胞15左右;组织18左右

*推荐使用Wcgene® mRNA cDNA kit合成cDNA

2. 板子使用前离心,2000r离心20 ,离心结束后将封板膜小心撕掉。

3. 按照表a配制cDNAmix混合液920μl,将配好的混合液混匀后每个孔9μl加板,加完后用透明封板膜封板,2000r离心20 ,上机检测

a. cDNAmix混合液配方表

组成成分

96孔

(搭配96孔板,每孔9 μl

Wcgene® mRNA qPCR mix

510 μl

cDNA sample

100 μl

RNAddH2O

290 μl

ROX Reference Dye50×

 20 μl

总体积

920 μl

4. 反应体系设置10μl程序设置如表b所示

b. PCR反应条件(WCGENE ® mRNA qPCR mix试剂盒为例)

循环

温度

时间

预变性

1

95℃

30 sec

变性

40

95℃

 5 sec

退火延伸

40

60℃

30 sec

熔解曲线分析

 

5. 上机开始Real Time PCR反应

6. 结果导出,数据分析


芯片与适用的Real Time PCR(本品仅适用于订单所写机器型号)

Plate format

Instrument provider

qPCR instrument model

A (96 well)

Roche Applied Science

LC480

Bio-rad

 CFX96

B (96 well)

Applied Biosystems

7500, 7900HT, ViiA 7  

C (96 well)

Applied Biosystems

7500 Fast System, 7900HT Fast System, StepOnePlus, ViiA 7 Fast System



参考文献

Zhu J J, Liu Y F, Zhang Y P, et al. VAMP3 and SNAP23 mediate the disturbed flow-induced endothelial microRNA secretion and smooth muscle hyperplasia[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences, 2017, 114(31): 8271-8276.

Siqing Yue, Jie Yu, Yuan Kong, Haofeng Chen, Manfei Mao, Chenyang Ji, Shuai Shao, Jianqiang Zhu, Jinping Gu, Meirong Zhao,Metabolomic modulations of HepG2 cells exposed to bisphenol analogues,Environment International,Volume 129,2019,Pages 59-67,ISSN 0160-4120,

Zhao Y, Wang J, Xu C, et al. HEG1 indicates poor prognosis and promotes hepatocellular carcinoma invasion, metastasis, and EMT by activating Wnt/β-catenin signaling[J]. Clinical Science, 2019, 133(14): 1645-1662.